Plates-Formes de Recherche en Neurosciences

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UNIS

Stages 2011

Master Neurosciences 1 : 2011

Contrôle du couplage Entrée/Sortie par l’activité GABAergique

Equipe d’Accueil :Plasticité de l’Excitabilité et Epilepsie

Responsable de Stage : Olivier Caillard, Chargé de Recherche

Contact :



Résumé du projet : L’amplitude et la cinétique des potentiels postsynatiques excitateurs (PPSEs) determinent la probabilité et la précision avec laquelle le neurone postsynaptique émet un potentiel d’action. Parmi les différents paramètres qui contrôlent la trajectoire de potentiel lorsqu’un neurone reçoit une entrée excitatrice, l’activité GABAergique joue un rôle important. Le but de ce stage est d’étudier et modéliser en détail l’ensemble des paramètres qui régissent ce contrôle.


Enregistrements électrophysiologiques couplés à de l’imagerie du calcium libre intracellulaire :
A. Enregistrement électrophysiologique en configuration cellule entière d’une cellule pyramidale de la couche 2/3 du cortex somatosensoriel. B.Réponse de la cellule pour des injections répétées d’un même saut de courant dépolarisant : noter la variabilité dans le temps d’occurrence de chaque potentiel d’action. C. Enregistrement électrophysiologique en configuration cellule entière d’une cellule pyramidale de la couche 5 du cortex somatosensoriel. La cellule, remplie avec un indicateur fluorescent sensible au calcium (oregon green) permet des mesures de calcium dans différents compartiments cellulaires du neurone (dendrite, soma, axone, voir régions d’intérêt notées en C. D. Une dépolarisation du neurone par injection de courant via la pipette d’enregistrement induit l’émission de potentiels d’action (5PA @ 50Hz dans cet exemple). Une augmentation transitoire du calcium intracellulaire peut alors être observée dans le soma mais aussi le dendrite proximal et distal de la cellule. E. Même expérience qu’en D mais avec une décharge de potentiels d’action moins rapide (5PA @ 6.7 Hz) dans cet exemple). On note une augmentation graduelle du calcium intracellulaire au cours de la décharge

Méthodes et Techniques Utilisées : Electrophysiologie in vitro, Enregistrements en configuration cellule entière et patch perforé, Courant impose dynamique, Micrososcopie infra-rouge, Imagerie par Fluorescence, Modélisation



INSERM UMR 641 - Laboratoire de Neurobiologie des Canaux Ioniques

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